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糖原PAS染色液(细胞专用)SH0828

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糖原PAS染色液(细胞专用)SH0828

规格: 5×20/ 5×50mL有效期:6个月有效产品内容:5×20ml5×50ml保存试剂(A): PAS固定液20ml50mlRT避光试剂(A): 过碘酸溶液20ml50ml4℃ 避光试剂(B): Schiff Reagent20ml50ml4℃ ···
5*20ml
5*50ml
价     格: 300.00

产品介绍

规格: 5×20/ 5×50mL

有效期:6个月有效

产品内容:


5×20ml

5×50ml

保存

试剂(A): PAS固定液

20ml

50ml

RT避光

试剂(A): 过碘酸溶液

20ml

50ml

4 避光

试剂(B): Schiff Reagent

20ml

50ml

4 避光

试剂(C): 亚硫酸钠溶液

20ml

50ml

RT 密闭

试剂(E): Mayer苏木素染色液

20ml

50ml

4 避光


产品简介:


糖原染色是病理学中常规的染色方法之一,McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白,该法常用来显示糖原和其他多糖,该技术不仅能显示糖原,还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂,它能氧化糖类及有关物质中的1,2-乙二醇基,使之变为二醛,醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物,产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质,使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间,使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化,这是很关键的步骤。


糖原PAS染色液(细胞专用)利用真菌含有多糖,过碘酸氧化真菌壁上的多糖而暴露出醛基,醛基与无色Schiff结合呈现红色。该染色法性能稳定,特异性强;操作简捷,仅需0.5h;浓度低过碘酸更适用于对真菌染色,无盐酸乙醇分化液分化步骤。


自备材料:


1、  蒸馏水


2、  系列乙醇


操作步骤(仅供参考):


1、  细胞、骨髓涂片用PAS固定液固定10~15min。


2、  水洗、晾干。


3、  入过碘酸溶液,室温氧化15-20min。


4、  自来水冲洗2次,蒸馏水浸洗2次。


5、  入Schiff Reagent并加盖,置于室温阴暗处浸染10~20min。


6、  亚硫酸钠溶液滴洗2次,每次2min。该步骤亦可省略。


7、  流水冲洗2min。


8、  入Mayer苏木素染色液,复染3~5min。水洗、晾干、镜检。


染色结果:

PAS反应阳性物质(糖原或多糖)

红色或紫红色

细胞核

蓝色

细胞质

深浅不一的红色

备注:颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。


阴性对照(可选):


1、  取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100ml,处理30~60min,与其他样本共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。


2、  (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30~60min,与其他样本共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。


3、  (备选方案)如果对照片采用其自身样本,对照片不经过碘酸溶液这一步,直接入Schiff Reagent。结果应为阴性。


注意事项:


1、  过碘酸氧化时间不宜过久,氧化时的温度以18~22℃最佳。


2、  过碘酸溶液、Schiff Reagent使用时避免接触过多的阳光和空气,使用前最好提前30min取出恢复至室温,避光暗处使用。


3、  过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要,该依据切片厚薄、细胞或组织的类别等决定。


4、  如常规切片建议用糖原PAS染色液,因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度都相对高。


5、  为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。


备注:以上数据均来自公开文献, 仅供参考。

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